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    悬浮细胞培养的方法

    发布时间: 2022-10-20  点击次数: 244次

    材料与仪器


    冻存 HeLa S3 细胞
    70% 乙醇 * MEM-10 胰酶/EDTA
    旋转瓶*培养基-5 25 cm2 组织培养瓶 C02 培养箱 Sorvall H-6000A 转子 100 ml 或 200 ml 通气旋转瓶和带滤膜的瓶盖


    步骤


    1. 将含有冻存 HeLa S3 细胞的安瓿放入 37℃ 水浴中解冻。

    2. 用 70% 乙醇对安瓿的顶端进行消毒,打开安瓿,用吸管将细胞转移到含有 5 ml * MEM-10 培养基的 25 cm2 组织培养瓶中,轻轻摇动培养瓶,使细胞均匀分布于培养瓶中,放入 5% CO2 加湿培养箱中 37℃ 培养过夜。

    3. 将培养基吸出,用 0.5 ml 37℃ 的胰酶/EDTA 覆盖细胞,消化 30~40 s。

    4. 加入 10 ml 旋转瓶*培养基-5,并将细胞转移至 50 ml 的离心管中。室温 1800 g 离心 5 min,弃上清。

    5. 将细胞沉淀悬浮在 5 ml 的旋转瓶*培养基-5 中,上下吹打,将细胞团打散。

    6. 在 100 ml 或 200 ml 通气旋转瓶中加入 50 ml 旋转瓶*培养基-5,并将细胞悬液转移到瓶中。

    7. 取出 1 ml 细胞悬液,用血细胞计数器(附录 3F) 进行细胞计数。加入适量的旋转瓶*培养基-5,使细胞密度为(3~4)× 105 细胞/ml。将细胞放入无 CO2 培养箱,37℃ 旋转培养。

    8. 随后的两天让细胞继续生长,并且每天对细胞进行计数,加入适量的旋转瓶*培养基-5 以维持(3~4)×105 细胞/ml 的细胞密度。

    9. 取 1 ml 的细胞悬液,用血细胞计数器对细胞进行监测。

    10. 当细胞密度达到(4~5)×105 细胞/ml 时,隔天或每天用培养基将细胞稀释至 1.5×105 或 2.5×105 细胞/ml。

    11. 分别将装有 50 ml 或 100 ml 细胞悬液的 100 ml 或 200 ml 通气旋转瓶放入 37℃ 无 CO2 培养箱旋转培养。每天或隔天传代。


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